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基因表達(dá)差異分析R工具包DESeq2的詳細(xì)使用方法和使用案例

這篇具有很好參考價(jià)值的文章主要介紹了基因表達(dá)差異分析R工具包DESeq2的詳細(xì)使用方法和使用案例。希望對(duì)大家有所幫助。如果存在錯(cuò)誤或未考慮完全的地方,請(qǐng)大家不吝賜教,您也可以點(diǎn)擊"舉報(bào)違法"按鈕提交疑問(wèn)。

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DESeq2是一種常用的差異表達(dá)基因分析工具,可用于RNA-seq數(shù)據(jù)的差異表達(dá)分析。下面是DESeq2的詳細(xì)使用步驟和全部腳本示例。

文章參考

Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2 | Genome Biology | Full Text (biomedcentral.com)

bioconda源對(duì)工具包的介紹:

Bioconductor - DESeq2

安裝

下面是在R中安裝DESeq2的詳細(xì)步驟:

  1. 安裝R和RStudio:

    • 如果你還沒(méi)有安裝R,可以在R官方網(wǎng)站下載并安裝最新版本的R。
    • 推薦使用RStudio作為R語(yǔ)言的集成開發(fā)環(huán)境。你可以在RStudio官網(wǎng)下載并安裝適合你操作系統(tǒng)的版本。
  2. 啟動(dòng)R或RStudio:

    • 打開R或者RStudio。
  3. 安裝DESeq2包:

    • 在R或RStudio的命令行中輸入以下命令安裝DESeq2包:
    if (!requireNamespace("BiocManager", quietly = TRUE))
        install.packages("BiocManager")
    
    BiocManager::install("DESeq2")
    

    這將會(huì)從Bioconductor倉(cāng)庫(kù)安裝DESeq2包及其依賴項(xiàng)。

  4. 加載DESeq2包:

    • 安裝完成后,在R或RStudio中輸入以下命令加載DESeq2包:
    library(DESeq2)

    確保沒(méi)有報(bào)錯(cuò),這樣DESeq2包就已經(jīng)成功加載了。

安裝完成后,你就可以使用DESeq2進(jìn)行基因表達(dá)差異分析了。記得在分析之前準(zhǔn)備好你的RNA-seq數(shù)據(jù)并按照DESeq2的文檔或教程進(jìn)行分析。

DESeq2 的完整使用步驟和示例分析腳本,以及每個(gè)步驟的輸入、輸出和解釋。

步驟 1: 讀取和整理數(shù)據(jù)

首先,加載必要的 R 包和數(shù)據(jù)文件。數(shù)據(jù)應(yīng)該包括表達(dá)矩陣和樣本信息。

# 讀取 DESeq2 包
library(DESeq2)

# 讀取表達(dá)矩陣
countData <- as.matrix(read.csv("count_matrix.csv", row.names = 1))

# 讀取樣本信息
sampleInfo <- read.csv("sample_info.csv")

# 創(chuàng)建 DESeq2 數(shù)據(jù)對(duì)象
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData, colData = sampleInfo, design = ~ condition)
  • count_matrix.csv: 包含基因或轉(zhuǎn)錄本的表達(dá)矩陣,行代表基因或轉(zhuǎn)錄本,列代表樣本。
  • sample_info.csv: 包含每個(gè)樣本的信息,例如條件、分組等。

步驟 2: 數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化和差異表達(dá)分析

使用 DESeq2 對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化和差異表達(dá)分析。

# 標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)據(jù)
dds <- DESeq(dds)

# 進(jìn)行差異表達(dá)分析
res <- results(dds)

步驟 3: 結(jié)果解釋和可視化

對(duì)差異表達(dá)結(jié)果進(jìn)行解釋和可視化。

# 查看差異表達(dá)基因
topGenes <- head(rownames(res[order(res$padj), ]), 10)

# 輸出差異表達(dá)基因
write.csv(res, file = "deseq2_results.csv")

# 繪制差異表達(dá)圖
plotCounts(dds, gene = topGenes, intgroup = "condition")
  • deseq2_results.csv: 包含差異表達(dá)分析結(jié)果的輸出文件。

解釋和注意事項(xiàng):

  • DESeqDataSetFromMatrix(): 用于創(chuàng)建 DESeq2 數(shù)據(jù)對(duì)象,其中 countData 是表達(dá)矩陣,sampleInfo 包含樣本信息,design 參數(shù)指定實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。
  • DESeq(): 對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行歸一化和標(biāo)準(zhǔn)化,準(zhǔn)備進(jìn)行差異表達(dá)分析。
  • results(): 提取差異表達(dá)分析的結(jié)果,包括基因表達(dá)差異統(tǒng)計(jì)信息。
  • 結(jié)果包括基因表達(dá)水平的差異統(tǒng)計(jì)指標(biāo),如 fold change、調(diào)整的 p 值(padj)等。
  • plotCounts(): 用于繪制基因表達(dá)水平的差異示意圖,以更直觀地展示不同條件下基因的表達(dá)情況。

使用案例

以下是三個(gè)使用 DESeq2 工具包的案例,包括完整的腳本以及輸入輸出文件內(nèi)容和格式的詳細(xì)解釋。

案例 1: 基因差異表達(dá)分析

輸入文件:

  • count_matrix.csv: 包含基因表達(dá)計(jì)數(shù)矩陣,行代表基因,列代表樣本。
  • sample_info.csv: 包含每個(gè)樣本的信息,例如條件或組別。

腳本:

# 讀取 DESeq2 包
library(DESeq2)

# 讀取表達(dá)矩陣和樣本信息
countData <- as.matrix(read.csv("count_matrix.csv", row.names = 1))
sampleInfo <- read.csv("sample_info.csv")

# 創(chuàng)建 DESeq2 數(shù)據(jù)對(duì)象
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData, colData = sampleInfo, design = ~ condition)

# 標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)據(jù)和進(jìn)行差異表達(dá)分析
dds <- DESeq(dds)
res <- results(dds)

# 輸出差異表達(dá)基因列表和統(tǒng)計(jì)信息
write.csv(res, file = "deseq2_results.csv")

# 繪制差異表達(dá)基因的表達(dá)圖
topGenes <- head(rownames(res[order(res$padj), ]), 10)
plotCounts(dds, gene = topGenes, intgroup = "condition")

輸出文件:

  • deseq2_results.csv: 包含差異表達(dá)分析結(jié)果的輸出文件。包括基因、fold change、p 值、調(diào)整的 p 值等信息。
  • 圖形文件:包含差異表達(dá)基因的表達(dá)圖,顯示不同條件下基因的表達(dá)情況。

案例 2: 多組實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的差異分析

輸入文件:

  • count_matrix.csv
  • sample_info_multigroup.csv: 包含多組實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的樣本信息。

腳本:

# 讀取 DESeq2 包
library(DESeq2)

# 讀取表達(dá)矩陣和樣本信息
countData <- as.matrix(read.csv("count_matrix.csv", row.names = 1))
sampleInfo <- read.csv("sample_info_multigroup.csv")

# 創(chuàng)建 DESeq2 數(shù)據(jù)對(duì)象(多組實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì))
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData, colData = sampleInfo, design = ~ group + condition)

# 標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)據(jù)和進(jìn)行差異表達(dá)分析
dds <- DESeq(dds)
res <- results(dds)

# 輸出差異表達(dá)基因列表和統(tǒng)計(jì)信息
write.csv(res, file = "deseq2_results_multigroup.csv")

輸出文件:

  • deseq2_results_multigroup.csv: 包含多組實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)差異表達(dá)分析結(jié)果的輸出文件。
gene_id baseMean log2FoldChange lfcSE stat pvalue padj
GeneA 100 1.5 0.2 7.2 0.0001 0.001
GeneB 80 -0.8 0.3 -4.5 0.0002 0.002
GeneC 50 2.1 0.5 6 0.0003 0.003
  • gene_id: 基因或轉(zhuǎn)錄本的標(biāo)識(shí)符。
  • baseMean: 平均表達(dá)量。
  • log2FoldChange: 對(duì)數(shù)變換后的 fold change,表示在不同條件之間的表達(dá)倍數(shù)變化。
  • lfcSE: log2 fold change 的標(biāo)準(zhǔn)誤差。
  • stat: 統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn)值。
  • pvalue: 未經(jīng)校正的 p 值。
  • padj: 經(jīng)過(guò)多重假設(shè)檢驗(yàn)校正后的調(diào)整 p 值(通常使用 FDR 校正),用于控制假陽(yáng)性發(fā)現(xiàn)率。

案例 3: 時(shí)間序列分析

輸入文件:

  • count_matrix_timeseries.csv: 包含時(shí)間序列實(shí)驗(yàn)的基因表達(dá)計(jì)數(shù)矩陣。
GeneID Sample1 Sample2 Sample3 Sample4
GeneA 10 15 20 25
GeneB 5 8 12 18
GeneC 30 35 40 45
...
  • sample_info_timeseries.csv: 包含時(shí)間序列實(shí)驗(yàn)的樣本信息,包括時(shí)間點(diǎn)等信息。
Sample TimePoint Treatment
Sample1 0 Control
Sample2 3 DrugA
Sample3 6 DrugA
Sample4 9 Control
...

腳本:

# 讀取 DESeq2 包
library(DESeq2)

# 讀取表達(dá)矩陣和樣本信息
countData <- as.matrix(read.csv("count_matrix_timeseries.csv", row.names = 1))
sampleInfo <- read.csv("sample_info_timeseries.csv")

# 創(chuàng)建 DESeq2 數(shù)據(jù)對(duì)象(時(shí)間序列實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì))
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData, colData = sampleInfo, design = ~ time_point)

# 標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)據(jù)和進(jìn)行差異表達(dá)分析
dds <- DESeq(dds)
res <- results(dds)

# 輸出差異表達(dá)基因列表和統(tǒng)計(jì)信息
write.csv(res, file = "deseq2_results_timeseries.csv")

輸出文件:

  • deseq2_results_timeseries.csv: 包含時(shí)間序列實(shí)驗(yàn)差異表達(dá)分析結(jié)果的輸出文件。

?DESeq2分析結(jié)果進(jìn)行差異表達(dá)火山圖的繪制

DESeq2 的結(jié)果文件 deseq2_results.csv,文件的格式類似于:

gene_id baseMean log2FoldChange lfcSE stat pvalue padj
GeneA 100 1.5 0.2 7.2 0.0001 0.001
GeneB 80 -0.8 0.3 -4.5 0.0002 0.002
GeneC 50 2.1 0.5 6 0.0003 0.003

使用 R 語(yǔ)言和 ggplot2 庫(kù)來(lái)繪制火山圖的示例代碼:

# 導(dǎo)入必要的庫(kù)
library(ggplot2)
library(dplyr) # 用于數(shù)據(jù)處理

# 讀取差異表達(dá)結(jié)果文件
results <- read.csv("deseq2_results.csv")

# 設(shè)定顯著性閾值(例如,調(diào)整的 p 值)
threshold <- 0.05

# 根據(jù)顯著性閾值篩選差異表達(dá)基因
significant_genes <- results %>%
  filter(padj < threshold)

# 繪制火山圖
ggplot(results, aes(x = log2FoldChange, y = -log10(padj), color = ifelse(padj < threshold, "red", "black"))) +
  geom_point(size = 1.5) +
  scale_color_manual(values = c("black", "red"), labels = c("Not significant", "Significant")) +
  labs(x = "log2(Fold Change)", y = "-log10(adjusted p-value)", title = "Volcano Plot of Differential Expression") +
  theme_minimal()

這段代碼將根據(jù)調(diào)整的 p 值(padj)和 fold change(log2FoldChange)繪制火山圖。顯著性基因?qū)⒁约t色標(biāo)記,非顯著性基因?qū)⒁院谏珮?biāo)記。您可以調(diào)整 threshold 的值來(lái)控制顯著性。文章來(lái)源地址http://www.zghlxwxcb.cn/news/detail-852321.html

到了這里,關(guān)于基因表達(dá)差異分析R工具包DESeq2的詳細(xì)使用方法和使用案例的文章就介紹完了。如果您還想了解更多內(nèi)容,請(qǐng)?jiān)谟疑辖撬阉鱐OY模板網(wǎng)以前的文章或繼續(xù)瀏覽下面的相關(guān)文章,希望大家以后多多支持TOY模板網(wǎng)!

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